blog Desenvolvimento de ensaios de qPCR multiplex a partir do sistema óptico
Desenvolvimento de ensaios de qPCR multiplex a partir do sistema óptico

Desenvolvimento de ensaios de qPCR multiplex a partir do sistema óptico

há 7 horas

O instrumento faz parte do ensaio

Um ensaio de PCR multiplex em tempo real pode falhar antes mesmo de o primeiro primer ser sintetizado.

A falha pode começar com uma decisão aparentemente razoável: escolher um fluoróforo brilhante, adicionar outro alvo ou transferir um conjunto de sondas já estabelecido para uma plataforma de qPCR diferente.

Então, as curvas de amplificação tornam-se instáveis.

Um canal aumenta quando outro alvo está presente em abundância. Um sinal de poucas cópias desaparece na linha de base. As réplicas divergem. O ensaio parece ter um problema químico, embora a limitação subjacente seja óptica.

O instrumento não é um recipiente neutro para o ensaio. Sua fonte de luz, seus filtros, seu detector e seu método de normalização definem o que o ensaio consegue detectar de forma confiável.

Para fabricantes de produtos diagnósticos, isso tem uma consequência importante:

A seleção do fluoróforo deve começar pela arquitetura óptica do instrumento, e não por um catálogo de corantes.

O sistema óptico é o projeto do ensaio.

Por que o brilho, por si só, é um princípio de design fraco

Um fluoróforo costuma ser avaliado por seu brilho, coeficiente de extinção ou popularidade em ensaios existentes.

Essas propriedades são importantes. Mas não são suficientes.

O instrumento precisa primeiro excitar o corante de forma eficiente. Em seguida, a luz emitida deve passar pelo filtro correto e chegar ao detector com separação suficiente do fundo e dos canais adjacentes.

Um corante brilhante na janela óptica errada pode ter um desempenho pior do que um corante menos intenso que corresponda precisamente à plataforma.

A pergunta prática não é:

Qual fluoróforo produz o sinal mais forte?

É:

Qual repórter cria a impressão digital espectral mais clara e estável dentro deste instrumento?

Essa impressão digital depende de quatro variáveis interligadas:

  • Comprimento de onda e intensidade de excitação
  • Pico e largura de banda de emissão
  • Configuração dos filtros
  • Sensibilidade do detector e tempo de leitura

A alteração de uma variável pode modificar o comportamento de todo o painel multiplex.

Comece pela fonte de luz

A fonte de luz determina quais comprimentos de onda estão disponíveis para excitar os repórteres e com que consistência essa excitação é fornecida ao longo do tempo.

Lâmpadas de amplo espectro

As lâmpadas de quartzo-tungstênio-halogênio e de xenônio oferecem ampla cobertura de excitação.

Essa flexibilidade permite que os projetistas de instrumentos definam vários canais com diferentes combinações de filtros. Isso é útil quando um ensaio requer um painel de fluoróforos personalizado ou precisa oferecer suporte a uma ampla seleção de corantes disponíveis comercialmente.

O custo dessa flexibilidade é a complexidade operacional.

As lâmpadas podem gerar calor, exigir aquecimento e degradar-se com o uso. Alterações na saída podem afetar a calibração e a consistência quantitativa a longo prazo. Uma plataforma pode oferecer suporte, em princípio, a vários fluoróforos, mas ainda exigir manutenção cuidadosa para preservar seu desempenho original.

Os sistemas de amplo espectro costumam ser apropriados quando:

  • O portfólio de ensaios é diversificado
  • A flexibilidade dos fluoróforos é mais importante do que a simplicidade do hardware
  • A plataforma precisa oferecer suporte a várias configurações de filtros
  • A equipe de desenvolvimento consegue gerenciar a calibração e a substituição das lâmpadas

Matrizes de LED

As matrizes de LED fornecem uma excitação mais estreita e estável.

Um sistema de LED multicolorido pode oferecer quatro, cinco ou seis canais predefinidos, às vezes incluindo um canal projetado para detecção baseada em FRET. Os LEDs produzem pouco calor, têm longa vida útil e oferecem uma saída previsível para fluxos de trabalho diagnósticos de rotina.

Sua limitação é igualmente clara: o ensaio precisa se adaptar aos comprimentos de onda disponíveis.

Uma plataforma baseada em LED pode ser altamente confiável quando seu mapa de canais é conhecido no início do desenvolvimento. Ela é menos tolerante quando uma equipe tenta adicionar um fluoróforo não convencional em uma etapa avançada do processo de design.

Os sistemas de LED são especialmente atrativos quando:

  • O ensaio utiliza um conjunto padronizado de fluoróforos
  • Alto rendimento e baixa manutenção são prioridades
  • O instrumento funcionará continuamente em um laboratório clínico
  • A excitação reprodutível é mais importante do que a ampla flexibilidade óptica

Lasers

Os lasers fornecem uma excitação intensa e monocromática.

Essa intensidade pode melhorar a detecção de sinais fracos, especialmente quando o caminho óptico e o detector são projetados para isso. Mas mais excitação nem sempre é melhor para um ensaio quantitativo.

A exposição repetida a alta intensidade pode acelerar o fotobranqueamento. À medida que o repórter se degrada, a curva de amplificação pode deixar de refletir o acúmulo subjacente de amplicon. Assim, um sistema otimizado para o fluxo máximo de fótons pode criar uma nova fonte de erro quantitativo.

Para alvos de poucas cópias, a melhor estratégia geralmente é equilibrada:

  • Usar um repórter brilhante e fotoestável
  • Minimizar a excitação desnecessária
  • Controlar o tempo e a intensidade de exposição
  • Caracterizar a estabilidade do sinal ao longo de todo o programa de ciclos

Sensibilidade não é simplesmente a capacidade de coletar mais fótons. É a capacidade de coletar fótons informativos de forma consistente.

O detector altera o significado de uma medição

Dois instrumentos podem usar o mesmo fluoróforo e produzir comportamentos diferentes no ensaio porque coletam o sinal de maneiras distintas.

Câmeras CCD: aquisição simultânea de imagens

Uma câmera CCD pode registrar imagens de muitos ou de todos os poços no mesmo ponto do ciclo térmico.

Isso cria uma forte consistência temporal. Cada poço é observado com um tempo de ciclo quase idêntico, o que é valioso ao comparar a cinética de amplificação em uma placa.

No entanto, o caminho óptico pode variar ligeiramente de um poço para outro. Diferenças de volume, posicionamento, plástico ou iluminação podem influenciar a intensidade medida.

Por isso, alguns sistemas baseados em CCD utilizam um corante de referência passivo, como o ROX. O sinal de referência ajuda a normalizar as variações ópticas.

Isso cria uma relação de compromisso no design:

  • A normalização pode melhorar a consistência entre os poços
  • O corante passivo ocupa capacidade óptica e química
  • Um canal usado para ROX pode deixar de estar disponível para um alvo
  • A mistura principal deve ser compatível com a exigência de corante de referência

O ROX, portanto, não é um ingrediente universal. Ele é uma consequência de uma arquitetura de medição específica.

Scanners com PMT: leitura sequencial e sensível

Os tubos fotomultiplicadores podem detectar níveis muito baixos de luz com alta sensibilidade.

Em muitos sistemas, os poços são medidos sequencialmente, e não simultaneamente. Isso pode reduzir o fundo e melhorar a detecção de poucas cópias, mas introduz uma pequena diferença de tempo entre os poços. Uma varredura pode levar vários segundos, e a placa não é observada exatamente no mesmo instante.

Para a interpretação rotineira de resultados de endpoint, essa diferença de tempo pode ser administrável. Para ensaios que dependem fortemente de uma comparação cinética precisa, ela deve ser avaliada durante a validação.

Os sistemas baseados em PMT costumam ser adequados para:

  • Alvos de poucas cópias
  • Detecção com baixo fundo
  • Alta sensibilidade analítica
  • Ensaios nos quais o desempenho de contagem de fótons é mais importante do que a aquisição simultânea

A questão central não é saber se um PMT é sensível. É saber se todo o fluxo de trabalho leva em conta a aquisição sequencial.

Fotodiodos filtrados: dedicados e previsíveis

Os fotodiodos filtrados são normalmente combinados com excitação por LED.

Eles fazem a leitura de canais ópticos direcionados com hardware relativamente simples e baixos requisitos de manutenção. Isso os torna práticos para ensaios de multiplexidade baixa a média, nos quais cada canal tem uma função definida.

Sua vantagem é a previsibilidade. Sua limitação é a flexibilidade.

Uma plataforma com fotodiodos pode ser uma escolha eficiente quando o painel do ensaio é estável, o número de alvos é controlado e o custo de fabricação e a facilidade de manutenção são tão importantes quanto a sensibilidade máxima.

A quantidade de canais não é a capacidade multiplex

Um instrumento com seis canais ópticos não oferece automaticamente suporte a um ensaio diagnóstico de seisplex.

O limite real é a separação espectral.

Cada repórter emite em uma faixa de comprimentos de onda. Se o perfil de emissão de um corante se estende até a faixa de um filtro vizinho, o detector registra uma mistura, e não um sinal limpo e específico do alvo.

Isso é crosstalk espectral.

O crosstalk torna-se especialmente perigoso quando um alvo está presente em alta concentração e outro está próximo do limite de detecção. O canal forte pode elevar a linha de base aparente do canal fraco, produzindo falsos positivos, quantificação distorcida ou ciclos de limiar inconsistentes.

Uma forma útil de avaliar um painel multiplex é perguntar:

Pergunta de design Por que isso importa
Onde está o pico de emissão de cada repórter? O pico deve estar alinhado com a janela de detecção do instrumento.
Qual é a largura de cada espectro de emissão? Uma emissão ampla aumenta o risco de transbordamento de sinal.
Quão estreitos são os filtros do instrumento? Filtros estreitos melhoram a separação, mas podem reduzir o sinal coletado.
O software consegue compensar a sobreposição espectral? A compensação ajuda, mas não consegue recuperar informações que a óptica nunca separou.
O que acontece quando um alvo está presente em grande abundância? O canal mais forte frequentemente expõe as fragilidades do painel.

O número apresentado no folheto do instrumento é apenas o ponto de partida.

O crosstalk, e não a quantidade de canais, é o verdadeiro limite da multiplexidade.

Construa um mapa espectral antes de encomendar as sondas

Um design robusto de ensaio começa com um mapa de canais.

Para cada repórter candidato, registre:

  • Máximo de excitação
  • Máximo de emissão
  • Brilho relativo
  • Fotoestabilidade
  • Compatibilidade com os filtros do instrumento
  • Transbordamento esperado para os canais adjacentes
  • Compatibilidade com o quencher selecionado
  • Disponibilidade nas plataformas pretendidas

Em seguida, avalie o painel como um sistema.

Um fluoróforo que apresenta bom desempenho em um ensaio simplex pode se tornar inadequado quando combinado com outro corante. Da mesma forma, um painel que funciona em um instrumento pode perder separação em outro porque as larguras de banda dos filtros e as curvas de resposta dos detectores são diferentes.

A pergunta sobre a transferência deve, portanto, ser específica:

Esta plataforma preserva a distância espectral e a relação sinal-fundo das quais dependia a validação original?

“Compatível com qPCR” é uma categoria ampla demais para responder a essa pergunta.

A química da sonda completa o design óptico

O bloco óptico não consegue compensar uma sonda ruidosa.

Em uma sonda fluorogênica, o repórter e o quencher são projetados para permanecer opticamente silenciosos até que a amplificação separe ou altere sua relação. As sondas de hidrólise utilizam clivagem enzimática para liberar o repórter do quencher. Os molecular beacons utilizam uma alteração conformacional.

Ambos os designs dependem da qualidade química.

Um oligonucleotídeo marcado nas duas extremidades e mal purificado pode contribuir com fluorescência residual para a linha de base. Um quencher inadequado pode não absorver eficientemente a emissão do repórter. Um quencher fluorescente também pode introduzir sinais secundários em um painel já congestionado.

Para ensaios multiplex, o quencher deve ser selecionado considerando o conjunto completo de repórteres.

Considerações importantes incluem:

  • Absorbância ampla nos comprimentos de onda dos repórteres
  • Baixa fluorescência residual
  • Reemissão mínima nos canais de detecção ativos
  • Desempenho consistente em diferentes comprimentos e sequências de sondas
  • Pureza química adequada para detecção com baixo fundo

O objetivo não é apenas criar um sinal positivo brilhante. É criar um estado negativo escuro e estável.

Esse estado negativo determina com que confiança o sistema consegue reconhecer um positivo fraco.

O fundo tem uma psicologia própria

Um alvo de poucas cópias não falha de forma dramática. Ele desaparece gradualmente.

A linha de base aumenta ligeiramente. Uma réplica ultrapassa o limiar tardiamente. O operador observa uma curva ambígua e começa a questionar a amostra, a extração ou o lote de reagentes.

É nesse ponto que o fundo se torna mais do que uma especificação de engenharia. Ele altera o julgamento humano.

Um fundo elevado incentiva o uso de limiares conservadores. Uma compensação excessiva estimula uma falsa confiança. Linhas de base variáveis tornam os resultados limítrofes difíceis de interpretar e mais difíceis de defender durante a verificação.

Duas fontes de fundo merecem atenção especial:

Autofluorescência

Consumíveis plásticos, componentes ópticos, reagentes e matrizes de amostras podem emitir luz sob excitação.

Plásticos de baixa fluorescência e consumíveis cuidadosamente selecionados reduzem essa contribuição. O efeito deve ser caracterizado com a placa, a mistura principal e a matriz da amostra reais, e não apenas com água.

Corrente escura do detector

Os fotodetectores podem gerar um sinal mesmo sem fluorescência significativa.

A corrente escura torna-se importante quando o ensaio está operando próximo ao seu limite de detecção. O resfriamento do detector, a área ativa, o tempo de integração e os componentes eletrônicos do instrumento influenciam o nível de ruído.

A lição prática é simples:

O desempenho do limite de detecção pertence ao sistema óptico e químico completo, e não à molécula do repórter isoladamente.

O design multiplex é um equilíbrio entre três relógios

Todo ensaio de PCR em tempo real opera contra três formas de tempo:

  1. A cinética de amplificação da reação
  2. O tempo de aquisição do instrumento
  3. A estabilidade fotoquímica do repórter

Um sistema CCD alinha o relógio de aquisição entre os poços, mas pode exigir normalização passiva. Um scanner com PMT oferece um forte desempenho em baixa luminosidade, mas introduz um tempo de leitura sequencial. Uma fonte de luz de alta potência aumenta o sinal instantâneo, mas pode reduzir a vida útil do repórter.

Esses compromissos podem ser resumidos da seguinte forma:

Prioridade Direção óptica Principal benefício Principal risco
Multiplexidade de alto rendimento LEDs multicanais com filtros estreitos Excitação de canal estável e repetível Limitada a comprimentos de onda predefinidos
Sensibilidade para poucas cópias PMT ou detecção híbrida de alta sensibilidade Forte desempenho na contagem de fótons Leitura sequencial e defasagem temporal
Simplicidade operacional LEDs com fotodiodos filtrados Longa vida útil e baixa manutenção Menor flexibilidade para painéis ampliados
Portabilidade entre plataformas Corantes amplamente compatíveis, como FAM, HEX e ROX Transferência mais fácil entre instrumentos Diferenças de normalização e filtros específicas da plataforma
Máxima flexibilidade óptica Lâmpada de amplo espectro com filtros configuráveis Oferece suporte a conjuntos diversificados de fluoróforos Calor, calibração e envelhecimento da lâmpada
Fotoestabilidade Excitação moderada e controlada Curvas quantitativas mais estáveis Pode exigir uma química mais brilhante ou eficiente

Não existe uma arquitetura óptica universalmente superior.

Existe apenas uma correspondência melhor entre a arquitetura, o objetivo diagnóstico e a estratégia de validação.

Um fluxo de trabalho prático para o desenvolvimento de IVD

1. Defina a premissa do instrumento desde cedo

Defina a família de instrumentos pretendida antes de finalizar o painel de fluoróforos.

Registre os canais disponíveis, as fontes de excitação, os filtros de emissão, o tipo de detector, a sequência de varredura, os requisitos de normalização e o modelo de compensação do software.

2. Atribua primeiro o alvo mais difícil

O alvo mais difícil geralmente é o alvo de poucas cópias, baixa abundância ou importância clínica decisiva.

Atribua a ele o canal disponível mais limpo e as condições mais favoráveis de relação sinal-fundo. Não atribua canais apenas por conveniência ou pela ordem em que os alvos foram adicionados.

3. Submeta o sinal mais forte a testes de estresse

Avalie o painel com a concentração máxima esperada de cada alvo.

O alvo mais forte não deve criar um aumento falso nos canais adjacentes. Teste isso usando controles de cor única, controles mistos fortemente positivos e fundos de amostras clinicamente realistas.

4. Valide a química e a óptica em conjunto

O desempenho de uma sonda depende de seu repórter, quencher, sequência, purificação, mistura principal e canal óptico.

A alteração de qualquer um desses elementos pode modificar a fluorescência da linha de base e a eficiência aparente. Portanto, a qualificação deve utilizar a química final da sonda na configuração final do instrumento.

5. Planeje a portabilidade como um requisito separado

Um ensaio destinado a várias plataformas precisa de mais do que corantes conhecidos.

Para cada alvo, documente:

  • O canal do instrumento utilizado
  • Os corantes de referência passivos necessários
  • As configurações de compensação espectral
  • O comportamento aceitável da linha de base
  • A relação sinal-fundo mínima
  • Os limites de detecção específicos da plataforma
  • Quaisquer alterações na mistura principal

A portabilidade é um resultado de engenharia. Ela deve ser projetada e verificada, não presumida.

Escolhendo a estratégia de desenvolvimento correta

Designing Multiplex qPCR Assays from the Optical System Outward 1

A melhor estratégia óptica depende do que o produto diagnóstico precisa realizar.

Para painéis de alta multiplexidade

Escolha uma plataforma com vários canais discretos e filtros de banda estreita.

Priorize repórteres com perfis de emissão separados e, em seguida, verifique o transbordamento de sinal sob um desequilíbrio extremo entre os alvos. Utilize quenchers de amplo espectro e inclua controles de calibração espectral quando necessário.

Para detecção de poucas cópias

Priorize a sensibilidade do detector e o controle do fundo.

Sistemas baseados em PMT ou híbridos podem oferecer uma vantagem, mas a equipe deve caracterizar o tempo de varredura sequencial e o fotobranqueamento durante toda a execução. Repórteres brilhantes e estáveis geralmente são mais úteis do que simplesmente aumentar a intensidade de excitação.

Para fluxos de trabalho laboratoriais distribuídos

Prefira sistemas de LED estáveis, de baixa manutenção e com definições de canais previsíveis.

Um conjunto restrito de corantes pode ser uma vantagem quando simplifica o treinamento, a aquisição, a manutenção e o controle de qualidade em vários locais.

Para fabricantes que atendem a várias plataformas

Comece com repórteres amplamente compatíveis, mas valide o conjunto de filtros real de cada plataforma.

FAM, HEX e ROX podem oferecer um ponto de partida prático, mas seu comportamento ainda depende da resposta do detector, da largura de banda dos filtros, dos requisitos de corantes de referência e da compensação do software.

A decisão de engenharia que economiza mais tempo

Designing Multiplex qPCR Assays from the Optical System Outward 2

Muitas equipes perguntam se um novo fluoróforo pode ser adicionado depois que o ensaio já foi projetado.

Uma pergunta melhor é saber se a arquitetura óptica consegue resolver as informações adicionais sem tornar a interpretação menos confiável.

Cada canal adicionado introduz mais do que um novo corante. Ele acrescenta:

  • Outro espectro de emissão
  • Outra fonte de fundo
  • Outra relação de compensação
  • Outra interação entre sonda e quencher
  • Outra carga de validação
  • Outro possível modo de falha durante a transferência entre plataformas

A multiplexidade é valiosa porque aumenta a quantidade de informação por reação.

Ela se torna perigosa quando aumenta a ambiguidade mais rapidamente do que aumenta a informação.

O ensaio mais robusto não é aquele com mais cores. É aquele em que cada cor permanece interpretável nas piores condições clinicamente plausíveis.

Da limitação óptica à confiança diagnóstica

Designing Multiplex qPCR Assays from the Optical System Outward 3

O sistema óptico define os limites.

Dentro desses limites, os desenvolvedores de ensaios ainda têm escolhas importantes: seleção do repórter, química do quencher, purificação da sonda, intensidade de excitação, estratégia de normalização e design de validação.

A abordagem disciplinada consiste em fazer essas escolhas na ordem correta:

  1. Compreender a arquitetura do instrumento
  2. Mapear os canais espectrais utilizáveis
  3. Atribuir os repórteres de acordo com o risco e a abundância dos alvos
  4. Otimizar a química da sonda e do quencher
  5. Medir o crosstalk e o fundo sob condições de estresse
  6. Validar o desempenho em todo o conjunto de plataformas pretendido

Isso transforma as limitações do hardware em um roteiro de desenvolvimento.

A CamelBio apoia fabricantes de produtos diagnósticos, laboratórios e institutos de pesquisa com matérias-primas para IVD, serviços técnicos e consultoria em toda a trajetória, do conceito à clínica. Quando as limitações ópticas estiverem moldando seu ensaio multiplex, inicie a discussão do design com Entre em contato com nossos especialistas.

Produtos relacionados

Artigos relacionados

Produtos relacionados

Anticorpo Monoclonal de Coelho Anti-p63 para WB, ELISA, ChIP - Q9H3D4

Anticorpo Monoclonal de Coelho Anti-p63 para WB, ELISA, ChIP - Q9H3D4

Anticorpo monoclonal de coelho de alta qualidade que visa a p63 humana (TP63). Validado para WB, ELISA e ChIP, detecta p63 humana e de rato com um peso molecular de 45-77 kDa. Ideal para estudar regulação da transcrição, morfogênese epitelial e desenvolvimento de membros.

Anticorpo Policlonal Anti-STX1A para WB, IF/ICC, ELISA - Q16623

Anticorpo policlonal de coelho contra STX1A humana (Syntaxina-1A, HPC-1), validado para WB, IF/ICC, ELISA. Reage de forma cruzada com humano e rato. Ideal para estudar exocitose mediada por SNARE.

Anticorpo Policlonal Anti-CMIP para WB, IHC-P, ELISA - Q8IY22

Anticorpo policlonal de coelho de alta qualidade contra CMIP, validado para WB, IHC-P e ELISA. Reage cruzadamente com humano, camundongo e rato. Ideal para pesquisa de sinalização de células T.

Anticorpo policlonal de coelho para MonoMetil-Histona H3-K79 (Q16695 / P68431) para WB, ELISA, ChIP

Anticorpo policlonal de coelho para MonoMetil-Histona H3-K79 (Q16695 / P68431) para WB, ELISA, ChIP

Anticorpo policlonal de coelho específico para lisina 79 monometilada da histona H3 (SWISS Q16695/P68431). Validado para WB, ELISA, ChIP; reage cruzadamente com humano, camundongo, rato e tem reatividade prevista para uma ampla gama de espécies.

Anticorpo Policlonal Anti-Tau para WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA - P10636

Anticorpo Policlonal Anti-Tau para WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA - P10636

Anticorpo policlonal de coelho contra a proteína Tau humana (aa 658-758). Para WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA; apresenta reação cruzada com humano, camundongo e rato. A Tau é uma proteína associada aos microtúbulos, essencial para a polaridade e a estabilidade neuronais.

Anticorpo Policlonal Anti-SERPINA9 para WB, ELISA - Q86WD7

Anticorpo policlonal de coelho de alta qualidade contra SERPINA9 humano (Serpina A9), validado para Western blot e ELISA. Adequado para estudar a biologia de células B do centro germinativo e a função das serpinas.

Anticorpo Policlonal Anti-Proteína Príonic para WB, ELISA - P04156

Anticorpo Policlonal Anti-Proteína Príonic para WB, ELISA - P04156

Anticorpo policlonal de coelho direcionado à Proteína Príonic humana (PRNP). Validado para Western blot e ELISA, reage cruzadamente com camundongo. Útil para pesquisas sobre doenças priônicas, desenvolvimento neuronal e homeostase de ferro.

Anti-APITD1 pAb de coelho - Q8N2Z9

Anti-APITD1 pAb de coelho - Q8N2Z9

Anticorpo policlonal contra APITD1 (CENPS) humana, um componente chave da via da anemia de Fanconi e da montagem do cinetocoro. Validado para WB e ELISA.

Anticorpo Policlonal de Coelho Anti-POLR1C para WB e ELISA - O15160

Anticorpo Policlonal de Coelho Anti-POLR1C para WB e ELISA - O15160

Anticorpo policlonal de coelho direcionado contra a POLR1C humana (RPAC1), validado para Western blot e ELISA. Essencial para o estudo da transcrição pelas RNA polimerases I/III, da função nucleolar e das vias relacionadas à leucodistrofia. - O15160


Deixe sua mensagem